СЛИЯНИЕ С ФЬЮЖН-ПАРТНЕРОМ КАК СТРАТЕГИЯ ПОЛУЧЕНИЯ РАСТВОРИМОЙ ФОРМЫ РЕКОМБИНАНТНОГО ЧЕЛОВЕЧЕСКОГО ИНТЕРЛЕЙКИНА-4 В КЛЕТКАХ БАКТЕРИЙ ESCHERICHIA COLI

##plugins.themes.bootstrap3.article.main##

Дарья Викторовна Копылева
Максим Иосифович Потапович
Владимир Антонович Прокулевич

Анатацыя

Описаны этапы оптимизации для экспрессии в клетках бактерий E. coli кодирующей структурной части нуклеотидной последовательности человеческого гена интерлейкина-4 и клонирования в составе вектора рЕТ24b(+) под контролем промотора бактериофага Т7. Осуществлена индукция биосинтеза цитокина в клетках бактерий Е. coli BL21-Gold (DE3), определено преимущественное накопление нерастворимой формы целевого белка. Представлена схема слияния интерлейкина-4 с фьюжн-партнером SUMO, задетектирован низкий биосинтетический потенциал клеток штамма Е. coli BL21-Gold (DE3), несущих фьюжн-конструкты, и отсутствие увеличения выхода растворимой формы ИЛ-4.

##plugins.themes.bootstrap3.article.details##

Як цытаваць
[1]
Копылева, Д.В. et al. 2025. СЛИЯНИЕ С ФЬЮЖН-ПАРТНЕРОМ КАК СТРАТЕГИЯ ПОЛУЧЕНИЯ РАСТВОРИМОЙ ФОРМЫ РЕКОМБИНАНТНОГО ЧЕЛОВЕЧЕСКОГО ИНТЕРЛЕЙКИНА-4 В КЛЕТКАХ БАКТЕРИЙ ESCHERICHIA COLI. Веснік Брэсцкага ўніверсітэта. Серыя 5. Біялогія. Навукі аб зямлі. 2 (Dec. 2025), 62–70. DOI:https://doi.org/10.63874/2218-0311-2025-2-62-70.
Раздзел
БІЯЛОГІЯ

Бібліяграфічныя спасылкі

1. Keegan, A. D. Recent advances in understanding the role of IL-4 signaling / A. D. Keegan, W. J. Leonard, J. Zhu // Fac Rev. – 2021. – Vol. 10 – P. 71.

2. IL-4 as a Repurposed Biological Drug for Myocardial Infarction through Augmenta-tion of Reparative Cardiac Macrophages: Proof-of-Concept Data in Mice / Y. Shintani, T. Ito, L. Fields [et al.] // Sci Rep. – 2017. – Vol. 7, nr 1. – P. 68–77.

3. Interleukin-4 Treatment Restores Cellular Immunity After Ethanol Exposure and Burn Injury / K. A. N. Messingham, S. A. Heinrich, E. M. Schilling, E. J. Kovacs // Alcoholism Clin Exp Res. – 2002. – Vol. 26, nr 4. – P. 519–526.

4. Fabrication of Interleukin-4 Encapsulated Bioactive Microdroplets for Regulating In-flammation and Promoting Osteogenesis / Y. Zhang, J. Cao, M. Jian [et al.] // IJN. – 2023. – Vol. 18 – P. 2019–2035.

5. Advanced therapy medicinal products: current and future perspectives / E. Hanna, C. Rémuzat, P. Auquier, M. Toumi // J Mark Access Health Policy. – 2016. – Vol. 4. – P. 103–113.

6. Schmidt, F. R. Recombinant expression systems in the pharmaceutical industry / F. R. Schmidt // Appl Microbiol Biotechnol. – 2004. – Vol. 65, nr 4. – P. 363–372.

7. Jia, B. High-throughput recombinant protein expression in Escherichia coli : current status and future perspectives / B. Jia, C. O. Jeon // Open Biol. – 2016. – Vol. 6, nr 8. – P. 160–196.

8. Overton, T. W. Recombinant protein production in bacterial hosts / T. W. Overton // Drug Discovery Today. – 2014. – Vol. 19, nr 5. – P. 590–601.

9. Baneyx, F. Recombinant protein folding and misfolding in Escherichia coli / F. Baneyx, M. Mujacic // Nat Biotechnol. – 2004. – Vol. 22, nr 11. – P. 1399–1408.

10. Brondyk, W. H. Chapter 11 Selecting an Appropriate Method for Expressing a Re-combinant Protein / W. H. Brondyk // Methods in Enzymology // Elsevier, 2009. – Vol. 463. – P. 131–147.

11. SUMO fusion technology for difficult-to-express proteins / T. R. Butt, S. C. Edavet-tal, J. P. Hall, M. R. Mattern // Protein Expr Purif. – 2005. – Vol. 43, nr 1. – P. 1–9.

12. Comparison of SUMO fusion technology with traditional gene fusion systems: Enhanced expression and solubility with SUMO / J. G. Marblestone, S. C. Edavettal, Y. Lim [et al.] // Protein Sci. – 2006. – Vol. 15, nr 1. – P. 182–189.

13. Current protocols in molecular biology // ed. by F. M. Ausubel. – New York : Wiley, 1987. – Vol. 1.

14. Sanger, F. DNA sequencing with chain-terminating inhibitors / F. Sanger, S. Nicklen, A. R. Coulson // Proc Natl Acad Sci U S A. – 1977. – Vol. 74, nr 12. – P. 5463–5467.

15. Laemmli, U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly the head of bac-teriophage T4 / U. K. Laemmli // Nature. – 1970. – Vol. 227. – P. 680–685.

16. Protein Identification and Analysis Tools on the ExPASy Server / E. Gasteiger, C. Hoog¬land, A. Gattiker [et al.] // The Proteomics Protocols Handbook. – New Jersey : Humana Press, 2005. – P. 571–607.

17. Burland, T. G. DNASTAR’s Lasergene Sequence Analysis Software / T. G. Burland // Bioinformatics Methods and Protocols. – New Jersey : Humana Press, 1999. – Vol. 132. – P. 71–91.

18. Quantifying Western blots: Pitfalls of densitometry / M. Gassmann, B. Grenacher, B. Rohde, J. Vogel // Electrophoresis. – 2009. – Vol. 30, nr 11. – P. 1845–1855.

19. Schneider, C. A. NIH Image to ImageJ: 25 years of Image Analysis / C. A. Schnei-der, W. S. Rasband, K. W. Eliceiri // Nat Methods. – 2012. – Vol. 9, nr 7. – P. 671–675.

20. Expression of recombinant human IL-4 in Pichia pastoris and relationship between its glycosylation and biological activity / R. Li, C. Xie, Y. Zhang [et al.] // Protein Expression and Purification. – 2014. – Vol. 96. – P. 1–7.

21. Enhanced soluble expression of active recombinant human interleukin-29 using champion pET SUMO system / A. Munir, N. Ahmed, M. Akram [et al.] // Biotechnol Lett. – 2023. – Vol. 45, nr 8. – P. 1001–1011.